Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes

Castagna Arioli, Florencia

Supervisor(es): Lassabe Harguindeguy, Gabriel

Resumen:

Los inmunoensayos son un conjunto de técnicas que se utilizan para identificar y cuantificar un determinado analito presente en una muestra. Estas técnicas se basan en la gran especificidad y afinidad de los anticuerpos por sus antígenos específicos. Según su diseño, se pueden clasificar en dos tipos: competitivos y no-competitivos. En los inmunoensayos no-competitivos, los anticuerpos se utilizan en exceso, de forma que se maximiza la sensibilidad del ensayo. Sin embargo, los analitos de bajo peso molecular no pueden ser detectados mediante estos ensayos dado que carecen de la capacidad de unir dos anticuerpos en simultaneo. Estos analitos son comúnmente detectados mediante inmunoensayos competitivos, en donde el anticuerpo específico se encuentra en cantidades limitantes, limitando consigo la sensibilidad del ensayo. Diversas estrategias han surgido con el fin de generar inmunoensayos no-competitivos para analitos pequeños. Una de ellas surge en el laboratorio de Inmunoquímica de la Cátedra de Inmunología y se basa en la detección del inmunocomplejo (anticuerpo-analito) a través de péptidos cortos cíclicos expresados en partículas derivadas de fago o en proteínas multiméricas. Las proteínas multiméricas asociadas a los péptidos anti-inmunocomplejos se denominan nanopeptámeros y han permitido el desarrollo de inmunoensayos colorimétricos más sensibles que su contraparte competitiva, demostrando su eficacia en la detección de distintos herbicidas. Con el fin de generar inmunoensayos no-competitivos más sensibles, en este trabajó se apuntó a generar nanopeptámeros acoplados a señal luminiscente. Así, se expresaron de forma recombinante quimeras compuestas por un péptido específico contra el analito atrazina (13A) en fase con la proteína verotoxina y con la enzima luminiscente NanoLuc. Alternativamente, también se expresó de forma recombinante la estreptavidina en fase con la NanoLuc para su posterior asociación con péptido 13A biotinilado. Ambas quimeras no fueron aptas para la detección de atrazina, siendo que la enzima NanoLuc no resultó compatible con el formato multimérico de dichas construcciones a la vez que el péptido recombinante 13A no demostró detectar de forma específica el inmunocomplejo (anticuerpo-atrazina). En su lugar, se realizaron ensayos con Estreptavidina-Peroxidasa en conjunto con péptidos biotinilados y posterior detección luminiscente utilizando el sustrato comercial luminol. De esta forma, fue posible adaptar un ensayo basado en nanopeptámeros a un formato luminiscente, generando curvas de detección de atrazina de sensibilidad comparable a las previamente reportadas para otros nanopeptámeros y otros ensayos no-competitivos de detección de atrazina.


Detalles Bibliográficos
2024
INMUNOENSAYO
INMUNOLOGIA
TECNICAS DE INVESTIGACION
ELISA
NANOTECNOLOGIA
Español
Universidad de la República
COLIBRI
https://hdl.handle.net/20.500.12008/43298
Acceso abierto
Licencia Creative Commons Atribución - No Comercial - Sin Derivadas (CC - By-NC-ND 4.0)
_version_ 1807522901912453120
author Castagna Arioli, Florencia
author_facet Castagna Arioli, Florencia
author_role author
bitstream.checksum.fl_str_mv 6429389a7df7277b72b7924fdc7d47a9
a006180e3f5b2ad0b88185d14284c0e0
595f3513661016af87a602ed85779749
489f03e71d39068f329bdec8798bce58
b166afe98fc19d1686f4cee267066df2
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
bitstream.url.fl_str_mv http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/43298/5/license.txt
http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/43298/2/license_url
http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/43298/3/license_text
http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/43298/4/license_rdf
http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/43298/1/uy24-21039.pdf
collection COLIBRI
dc.contributor.filiacion.none.fl_str_mv Castagna Arioli Florencia
dc.creator.advisor.none.fl_str_mv Lassabe Harguindeguy, Gabriel
dc.creator.none.fl_str_mv Castagna Arioli, Florencia
dc.date.accessioned.none.fl_str_mv 2024-04-02T14:18:29Z
dc.date.available.none.fl_str_mv 2024-04-02T14:18:29Z
dc.date.issued.none.fl_str_mv 2024
dc.description.abstract.none.fl_txt_mv Los inmunoensayos son un conjunto de técnicas que se utilizan para identificar y cuantificar un determinado analito presente en una muestra. Estas técnicas se basan en la gran especificidad y afinidad de los anticuerpos por sus antígenos específicos. Según su diseño, se pueden clasificar en dos tipos: competitivos y no-competitivos. En los inmunoensayos no-competitivos, los anticuerpos se utilizan en exceso, de forma que se maximiza la sensibilidad del ensayo. Sin embargo, los analitos de bajo peso molecular no pueden ser detectados mediante estos ensayos dado que carecen de la capacidad de unir dos anticuerpos en simultaneo. Estos analitos son comúnmente detectados mediante inmunoensayos competitivos, en donde el anticuerpo específico se encuentra en cantidades limitantes, limitando consigo la sensibilidad del ensayo. Diversas estrategias han surgido con el fin de generar inmunoensayos no-competitivos para analitos pequeños. Una de ellas surge en el laboratorio de Inmunoquímica de la Cátedra de Inmunología y se basa en la detección del inmunocomplejo (anticuerpo-analito) a través de péptidos cortos cíclicos expresados en partículas derivadas de fago o en proteínas multiméricas. Las proteínas multiméricas asociadas a los péptidos anti-inmunocomplejos se denominan nanopeptámeros y han permitido el desarrollo de inmunoensayos colorimétricos más sensibles que su contraparte competitiva, demostrando su eficacia en la detección de distintos herbicidas. Con el fin de generar inmunoensayos no-competitivos más sensibles, en este trabajó se apuntó a generar nanopeptámeros acoplados a señal luminiscente. Así, se expresaron de forma recombinante quimeras compuestas por un péptido específico contra el analito atrazina (13A) en fase con la proteína verotoxina y con la enzima luminiscente NanoLuc. Alternativamente, también se expresó de forma recombinante la estreptavidina en fase con la NanoLuc para su posterior asociación con péptido 13A biotinilado. Ambas quimeras no fueron aptas para la detección de atrazina, siendo que la enzima NanoLuc no resultó compatible con el formato multimérico de dichas construcciones a la vez que el péptido recombinante 13A no demostró detectar de forma específica el inmunocomplejo (anticuerpo-atrazina). En su lugar, se realizaron ensayos con Estreptavidina-Peroxidasa en conjunto con péptidos biotinilados y posterior detección luminiscente utilizando el sustrato comercial luminol. De esta forma, fue posible adaptar un ensayo basado en nanopeptámeros a un formato luminiscente, generando curvas de detección de atrazina de sensibilidad comparable a las previamente reportadas para otros nanopeptámeros y otros ensayos no-competitivos de detección de atrazina.
dc.format.extent.es.fl_str_mv 68 h
dc.format.mimetype.es.fl_str_mv application/pdf
dc.identifier.citation.es.fl_str_mv Castagna Arioli, F. Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes [en línea] Tesis de grado. Montevideo : Udelar. FC. 2024
dc.identifier.uri.none.fl_str_mv https://hdl.handle.net/20.500.12008/43298
dc.language.iso.none.fl_str_mv es
spa
dc.publisher.es.fl_str_mv Udelar. FC.
dc.rights.license.none.fl_str_mv Licencia Creative Commons Atribución - No Comercial - Sin Derivadas (CC - By-NC-ND 4.0)
dc.rights.none.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/openAccess
dc.source.none.fl_str_mv reponame:COLIBRI
instname:Universidad de la República
instacron:Universidad de la República
dc.subject.other.es.fl_str_mv INMUNOENSAYO
INMUNOLOGIA
TECNICAS DE INVESTIGACION
ELISA
NANOTECNOLOGIA
dc.title.none.fl_str_mv Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes
dc.type.es.fl_str_mv Tesis de grado
dc.type.none.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/bachelorThesis
dc.type.version.none.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/acceptedVersion
description Los inmunoensayos son un conjunto de técnicas que se utilizan para identificar y cuantificar un determinado analito presente en una muestra. Estas técnicas se basan en la gran especificidad y afinidad de los anticuerpos por sus antígenos específicos. Según su diseño, se pueden clasificar en dos tipos: competitivos y no-competitivos. En los inmunoensayos no-competitivos, los anticuerpos se utilizan en exceso, de forma que se maximiza la sensibilidad del ensayo. Sin embargo, los analitos de bajo peso molecular no pueden ser detectados mediante estos ensayos dado que carecen de la capacidad de unir dos anticuerpos en simultaneo. Estos analitos son comúnmente detectados mediante inmunoensayos competitivos, en donde el anticuerpo específico se encuentra en cantidades limitantes, limitando consigo la sensibilidad del ensayo. Diversas estrategias han surgido con el fin de generar inmunoensayos no-competitivos para analitos pequeños. Una de ellas surge en el laboratorio de Inmunoquímica de la Cátedra de Inmunología y se basa en la detección del inmunocomplejo (anticuerpo-analito) a través de péptidos cortos cíclicos expresados en partículas derivadas de fago o en proteínas multiméricas. Las proteínas multiméricas asociadas a los péptidos anti-inmunocomplejos se denominan nanopeptámeros y han permitido el desarrollo de inmunoensayos colorimétricos más sensibles que su contraparte competitiva, demostrando su eficacia en la detección de distintos herbicidas. Con el fin de generar inmunoensayos no-competitivos más sensibles, en este trabajó se apuntó a generar nanopeptámeros acoplados a señal luminiscente. Así, se expresaron de forma recombinante quimeras compuestas por un péptido específico contra el analito atrazina (13A) en fase con la proteína verotoxina y con la enzima luminiscente NanoLuc. Alternativamente, también se expresó de forma recombinante la estreptavidina en fase con la NanoLuc para su posterior asociación con péptido 13A biotinilado. Ambas quimeras no fueron aptas para la detección de atrazina, siendo que la enzima NanoLuc no resultó compatible con el formato multimérico de dichas construcciones a la vez que el péptido recombinante 13A no demostró detectar de forma específica el inmunocomplejo (anticuerpo-atrazina). En su lugar, se realizaron ensayos con Estreptavidina-Peroxidasa en conjunto con péptidos biotinilados y posterior detección luminiscente utilizando el sustrato comercial luminol. De esta forma, fue posible adaptar un ensayo basado en nanopeptámeros a un formato luminiscente, generando curvas de detección de atrazina de sensibilidad comparable a las previamente reportadas para otros nanopeptámeros y otros ensayos no-competitivos de detección de atrazina.
eu_rights_str_mv openAccess
format bachelorThesis
id COLIBRI_f7d647a7b097718c4d764ecab344e8c9
identifier_str_mv Castagna Arioli, F. Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes [en línea] Tesis de grado. Montevideo : Udelar. FC. 2024
instacron_str Universidad de la República
institution Universidad de la República
instname_str Universidad de la República
language spa
language_invalid_str_mv es
network_acronym_str COLIBRI
network_name_str COLIBRI
oai_identifier_str oai:colibri.udelar.edu.uy:20.500.12008/43298
publishDate 2024
reponame_str COLIBRI
repository.mail.fl_str_mv mabel.seroubian@seciu.edu.uy
repository.name.fl_str_mv COLIBRI - Universidad de la República
repository_id_str 4771
rights_invalid_str_mv Licencia Creative Commons Atribución - No Comercial - Sin Derivadas (CC - By-NC-ND 4.0)
spelling Castagna Arioli Florencia2024-04-02T14:18:29Z2024-04-02T14:18:29Z2024Castagna Arioli, F. Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes [en línea] Tesis de grado. Montevideo : Udelar. FC. 2024https://hdl.handle.net/20.500.12008/43298Los inmunoensayos son un conjunto de técnicas que se utilizan para identificar y cuantificar un determinado analito presente en una muestra. Estas técnicas se basan en la gran especificidad y afinidad de los anticuerpos por sus antígenos específicos. Según su diseño, se pueden clasificar en dos tipos: competitivos y no-competitivos. En los inmunoensayos no-competitivos, los anticuerpos se utilizan en exceso, de forma que se maximiza la sensibilidad del ensayo. Sin embargo, los analitos de bajo peso molecular no pueden ser detectados mediante estos ensayos dado que carecen de la capacidad de unir dos anticuerpos en simultaneo. Estos analitos son comúnmente detectados mediante inmunoensayos competitivos, en donde el anticuerpo específico se encuentra en cantidades limitantes, limitando consigo la sensibilidad del ensayo. Diversas estrategias han surgido con el fin de generar inmunoensayos no-competitivos para analitos pequeños. Una de ellas surge en el laboratorio de Inmunoquímica de la Cátedra de Inmunología y se basa en la detección del inmunocomplejo (anticuerpo-analito) a través de péptidos cortos cíclicos expresados en partículas derivadas de fago o en proteínas multiméricas. Las proteínas multiméricas asociadas a los péptidos anti-inmunocomplejos se denominan nanopeptámeros y han permitido el desarrollo de inmunoensayos colorimétricos más sensibles que su contraparte competitiva, demostrando su eficacia en la detección de distintos herbicidas. Con el fin de generar inmunoensayos no-competitivos más sensibles, en este trabajó se apuntó a generar nanopeptámeros acoplados a señal luminiscente. Así, se expresaron de forma recombinante quimeras compuestas por un péptido específico contra el analito atrazina (13A) en fase con la proteína verotoxina y con la enzima luminiscente NanoLuc. Alternativamente, también se expresó de forma recombinante la estreptavidina en fase con la NanoLuc para su posterior asociación con péptido 13A biotinilado. Ambas quimeras no fueron aptas para la detección de atrazina, siendo que la enzima NanoLuc no resultó compatible con el formato multimérico de dichas construcciones a la vez que el péptido recombinante 13A no demostró detectar de forma específica el inmunocomplejo (anticuerpo-atrazina). En su lugar, se realizaron ensayos con Estreptavidina-Peroxidasa en conjunto con péptidos biotinilados y posterior detección luminiscente utilizando el sustrato comercial luminol. De esta forma, fue posible adaptar un ensayo basado en nanopeptámeros a un formato luminiscente, generando curvas de detección de atrazina de sensibilidad comparable a las previamente reportadas para otros nanopeptámeros y otros ensayos no-competitivos de detección de atrazina.Submitted by Faget Cecilia (lfaget@fcien.edu.uy) on 2024-04-02T13:44:05Z No. of bitstreams: 2 license_rdf: 25790 bytes, checksum: 489f03e71d39068f329bdec8798bce58 (MD5) uy24-21039.pdf: 1864858 bytes, checksum: b166afe98fc19d1686f4cee267066df2 (MD5)Approved for entry into archive by Faget Cecilia (lfaget@fcien.edu.uy) on 2024-04-02T13:44:20Z (GMT) No. of bitstreams: 2 license_rdf: 25790 bytes, checksum: 489f03e71d39068f329bdec8798bce58 (MD5) uy24-21039.pdf: 1864858 bytes, checksum: b166afe98fc19d1686f4cee267066df2 (MD5)Made available in DSpace by Luna Fabiana (fabiana.luna@seciu.edu.uy) on 2024-04-02T14:18:29Z (GMT). No. of bitstreams: 2 license_rdf: 25790 bytes, checksum: 489f03e71d39068f329bdec8798bce58 (MD5) uy24-21039.pdf: 1864858 bytes, checksum: b166afe98fc19d1686f4cee267066df2 (MD5) Previous issue date: 202468 happlication/pdfesspaUdelar. FC.Las obras depositadas en el Repositorio se rigen por la Ordenanza de los Derechos de la Propiedad Intelectual de la Universidad de la República.(Res. Nº 91 de C.D.C. de 8/III/1994 – D.O. 7/IV/1994) y por la Ordenanza del Repositorio Abierto de la Universidad de la República (Res. Nº 16 de C.D.C. de 07/10/2014)info:eu-repo/semantics/openAccessLicencia Creative Commons Atribución - No Comercial - Sin Derivadas (CC - By-NC-ND 4.0)INMUNOENSAYOINMUNOLOGIATECNICAS DE INVESTIGACIONELISANANOTECNOLOGIAEstrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentesTesis de gradoinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionreponame:COLIBRIinstname:Universidad de la Repúblicainstacron:Universidad de la RepúblicaCastagna Arioli, FlorenciaLassabe Harguindeguy, GabrielUniversidad de la República (Uruguay). Facultad de Ciencias.Licenciado en BioquímicaLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-84267http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/43298/5/license.txt6429389a7df7277b72b7924fdc7d47a9MD55CC-LICENSElicense_urllicense_urltext/plain; charset=utf-850http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/43298/2/license_urla006180e3f5b2ad0b88185d14284c0e0MD52license_textlicense_texttext/html; charset=utf-822292http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/43298/3/license_text595f3513661016af87a602ed85779749MD53license_rdflicense_rdfapplication/rdf+xml; charset=utf-825790http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/43298/4/license_rdf489f03e71d39068f329bdec8798bce58MD54ORIGINALuy24-21039.pdfuy24-21039.pdfapplication/pdf1864858http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/43298/1/uy24-21039.pdfb166afe98fc19d1686f4cee267066df2MD5120.500.12008/432982024-04-02 11:18:29.467oai:colibri.udelar.edu.uy:20.500.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Universidadhttps://udelar.edu.uy/https://www.colibri.udelar.edu.uy/oai/requestmabel.seroubian@seciu.edu.uyUruguayopendoar:47712024-07-25T14:37:55.819904COLIBRI - Universidad de la Repúblicafalse
spellingShingle Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes
Castagna Arioli, Florencia
INMUNOENSAYO
INMUNOLOGIA
TECNICAS DE INVESTIGACION
ELISA
NANOTECNOLOGIA
status_str acceptedVersion
title Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes
title_full Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes
title_fullStr Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes
title_full_unstemmed Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes
title_short Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes
title_sort Estrategias para adaptar inmunoensayos de detección de pequeñas moléculas a formatos luminiscentes
topic INMUNOENSAYO
INMUNOLOGIA
TECNICAS DE INVESTIGACION
ELISA
NANOTECNOLOGIA
url https://hdl.handle.net/20.500.12008/43298