Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa
Supervisor(es): Panizza Scasso, Paola - Dans Puiggròs, Pablo D.
Resumen:
Las enzimas son catalizadores eficientes y sustentables, capaces de llevar a cabo reacciones tanto quimio- como estereoespecíficas difíciles de lograr mediante métodos químicos tradicionales. La biocatálisis se alinea con los principios de la química verde, lo que redunda en ventajas tanto desde el punto de vista ambiental como económico. Un área en la que presenta un gran potencial es la síntesis de aminas quirales. Estas se encuentran presentes en un alto porcentaje de fármacos y compuestos bioactivos, por lo que su producción es un objetivo fundamental para la industria. Su síntesis química tradicional en forma enantioméricamente pura es difícil de lograr, requiriendo catalizadores que utilizan metales pesados y por lo tanto generan alto impacto ambiental. Enzimas como imino-reductasas, aminasas reductivas o transaminasas podrían proveer un proceso mejor para este fin, pero se hace necesaria la búsqueda de enzimas de este tipo que sean capaces de cumplir con los exigentes requisitos de los procesos industriales. En trabajos previos del grupo fue identificada y caracterizada una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa (TACap). Esta enzima demostró ser capaz de utilizar tanto D-alanina como isopropilamina como donores de amino, siendo esta última más atractiva desde un punto de vista económico. La producción y purificación de la enzima fueron optimizadas y la especificidad de sustrato ensayada. En particular se destaca la capacidad de esta enzima de tomar como sustrato aceptor de amino a la fenilacetona, dando como producto a la L anfetamina. Este producto es intermediario en la síntesis del [11C]L-deuterodeprenil, un radiofármaco de utilidad en el diagnóstico de enfermedades neurodegenerativas de uso actualmente en el Centro Uruguayo de Imagenología Molecular.Si bien esto resultó promisorio, el grupo se encontró con bajas conversiones debido a una baja estabilidad de la enzima en las condiciones de reacción. Este trabajo de maestría se planteó aprovechar el avance de los métodos bioinformáticos y de la química computacional para desarrollar, a partir de esta enzima ya caracterizada, variantes que permitiesen cumplir con los requisitos de actividad y estabilidad requeridos para el escalado de la reacción mencionada anteriormente. Partiendo de esta premisa fue recreada una estructura tridimensional de TACap, cuya dinámica molecular fue simulada y analizada para comprender las interacciones moleculares presentes y proponer modificaciones que pudiesen aumentar su estabilidad. Mediante esta estrategia se propuso la eliminación de dos regiones desordenadas. En paralelo fue seguida una estrategia basada en el análisis de la secuencia: fue construida una secuencia consenso utilizando 919 secuencias relacionadas a la TACap. Se ha reportado que los aminoácidos conservados pueden contribuir favorablemente a la estabilidad, por lo que se seleccionó un conjunto de 41 mutaciones puntuales (aminoácido nativo intercambiado por aminoácido consenso) con potencial para estabilizar la proteína. xi Las modificaciones propuestas fueron incorporadas sobre el gen codificante de la enzima nativa mediante PCR, y las variantes fueron expresadas para analizar su estabilidad y actividad. La estabilidad fue evaluada mediante la medida de la temperatura de melting (desnaturalización) aparente (Tm) de las proteínas, y aquellas con un Tm superior a aquel de la enzima nativa fueron evaluadas en cuanto a su actividad. La prueba de actividad fue llevada a cabo mediante un ensayo espectrofotométrico con un sustrato modelo, y aquellas enzimas con una actividad comparable o superior a la de la enzima nativa fueron consideradas para el siguiente paso.Las tres mejores variantes fueron combinadas para dar lugar a cuatro enzimas que fueron nuevamente evaluadas en cuanto a su estabilidad y actividad. Una de estas variantes, conteniendo las mutaciones L106V y Δ211-217, presentó un aumento en la Tm de 6°C, junto con una actividad relativa de 213% comparada con la enzima original, lo que la vuelve una opción muy prometedora para su aplicación a la síntesis del radiofármaco de interés.
2023 | |
BIOCATALISIS BIOINFORMATICA TRANSAMINASA |
|
Español | |
Universidad de la República | |
COLIBRI | |
https://hdl.handle.net/20.500.12008/41378 | |
Acceso abierto | |
Licencia Creative Commons Atribución - No Comercial - Sin Derivadas (CC - By-NC-ND 4.0) |
_version_ | 1807522967533387776 |
---|---|
author | Tijman Nuñez, Ariel |
author_facet | Tijman Nuñez, Ariel |
author_role | author |
bitstream.checksum.fl_str_mv | 6429389a7df7277b72b7924fdc7d47a9 a006180e3f5b2ad0b88185d14284c0e0 6eed504571858d3e58aeed5ad67e191a 489f03e71d39068f329bdec8798bce58 27ddf1da0d00c21640bed565ef6d26bf |
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv | MD5 MD5 MD5 MD5 MD5 |
bitstream.url.fl_str_mv | http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/41378/5/license.txt http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/41378/2/license_url http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/41378/3/license_text http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/41378/4/license_rdf http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/41378/1/TM_Tijman.pdf |
collection | COLIBRI |
dc.contributor.filiacion.none.fl_str_mv | Tijman Nuñez Ariel |
dc.creator.advisor.none.fl_str_mv | Panizza Scasso, Paola Dans Puiggròs, Pablo D. |
dc.creator.none.fl_str_mv | Tijman Nuñez, Ariel |
dc.date.accessioned.none.fl_str_mv | 2023-11-21T16:01:02Z |
dc.date.available.none.fl_str_mv | 2023-11-21T16:01:02Z |
dc.date.issued.none.fl_str_mv | 2023 |
dc.description.abstract.none.fl_txt_mv | Las enzimas son catalizadores eficientes y sustentables, capaces de llevar a cabo reacciones tanto quimio- como estereoespecíficas difíciles de lograr mediante métodos químicos tradicionales. La biocatálisis se alinea con los principios de la química verde, lo que redunda en ventajas tanto desde el punto de vista ambiental como económico. Un área en la que presenta un gran potencial es la síntesis de aminas quirales. Estas se encuentran presentes en un alto porcentaje de fármacos y compuestos bioactivos, por lo que su producción es un objetivo fundamental para la industria. Su síntesis química tradicional en forma enantioméricamente pura es difícil de lograr, requiriendo catalizadores que utilizan metales pesados y por lo tanto generan alto impacto ambiental. Enzimas como imino-reductasas, aminasas reductivas o transaminasas podrían proveer un proceso mejor para este fin, pero se hace necesaria la búsqueda de enzimas de este tipo que sean capaces de cumplir con los exigentes requisitos de los procesos industriales. En trabajos previos del grupo fue identificada y caracterizada una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa (TACap). Esta enzima demostró ser capaz de utilizar tanto D-alanina como isopropilamina como donores de amino, siendo esta última más atractiva desde un punto de vista económico. La producción y purificación de la enzima fueron optimizadas y la especificidad de sustrato ensayada. En particular se destaca la capacidad de esta enzima de tomar como sustrato aceptor de amino a la fenilacetona, dando como producto a la L anfetamina. Este producto es intermediario en la síntesis del [11C]L-deuterodeprenil, un radiofármaco de utilidad en el diagnóstico de enfermedades neurodegenerativas de uso actualmente en el Centro Uruguayo de Imagenología Molecular.Si bien esto resultó promisorio, el grupo se encontró con bajas conversiones debido a una baja estabilidad de la enzima en las condiciones de reacción. Este trabajo de maestría se planteó aprovechar el avance de los métodos bioinformáticos y de la química computacional para desarrollar, a partir de esta enzima ya caracterizada, variantes que permitiesen cumplir con los requisitos de actividad y estabilidad requeridos para el escalado de la reacción mencionada anteriormente. Partiendo de esta premisa fue recreada una estructura tridimensional de TACap, cuya dinámica molecular fue simulada y analizada para comprender las interacciones moleculares presentes y proponer modificaciones que pudiesen aumentar su estabilidad. Mediante esta estrategia se propuso la eliminación de dos regiones desordenadas. En paralelo fue seguida una estrategia basada en el análisis de la secuencia: fue construida una secuencia consenso utilizando 919 secuencias relacionadas a la TACap. Se ha reportado que los aminoácidos conservados pueden contribuir favorablemente a la estabilidad, por lo que se seleccionó un conjunto de 41 mutaciones puntuales (aminoácido nativo intercambiado por aminoácido consenso) con potencial para estabilizar la proteína. xi Las modificaciones propuestas fueron incorporadas sobre el gen codificante de la enzima nativa mediante PCR, y las variantes fueron expresadas para analizar su estabilidad y actividad. La estabilidad fue evaluada mediante la medida de la temperatura de melting (desnaturalización) aparente (Tm) de las proteínas, y aquellas con un Tm superior a aquel de la enzima nativa fueron evaluadas en cuanto a su actividad. La prueba de actividad fue llevada a cabo mediante un ensayo espectrofotométrico con un sustrato modelo, y aquellas enzimas con una actividad comparable o superior a la de la enzima nativa fueron consideradas para el siguiente paso.Las tres mejores variantes fueron combinadas para dar lugar a cuatro enzimas que fueron nuevamente evaluadas en cuanto a su estabilidad y actividad. Una de estas variantes, conteniendo las mutaciones L106V y Δ211-217, presentó un aumento en la Tm de 6°C, junto con una actividad relativa de 213% comparada con la enzima original, lo que la vuelve una opción muy prometedora para su aplicación a la síntesis del radiofármaco de interés. |
dc.description.tableofcontents.es.fl_txt_mv | Agradecimientos. Resumen. Abstract.Tabla de contenidos. Lista de tablas. Lista de figuras. Lista de abreviaturas. Introducción. Biocatálisis. Determinación de estructuras tridimensionales de proteínas. Estabilidad de enzimas. Diseño racional in silico. Simulaciones de dinámica molecular. Secuencia consenso. Cálculo de energía libre de plegamiento tras mutación. Aminas quirales y amino transaminasas. ω-transaminasa de Capronia semiimmersa. Vinculación al CUDIM. Objetivos. Objetivo general. Objetivos específicos. Capítulo I: Modelado, simulaciones y análisis bioinformático. 1.1. Introducción. 1.2. Materiales y métodos. 1.2.1. Modelado por homología. 1.2.2. Modelado con AlphaFold2. 1.2.3. Parametrización de aldimina interna Lys-PLP (KLP). 1.2.4. Preparación de estructuras para MD. 2.5. Preparación del sistema y corrida de MD de producción. 1.2.6. Análisis de simulaciones. 1.2.7. Secuencia consenso. 1.2.8. Cambio de energía libre de plegamiento tras mutación. 1.3. Resultados y discusión. 1.3.1. Obtención de estructura de TACap. 1.3.2. Generación de librería para la aldimina interna Lys-PLP (KLP). 1.3.3. Simulaciones de dinámica molecular. 1.3.4. Reportes previos. 1.3.5. Secuencia consenso. 1.3.6. Cambio de energía libre de plegamiento tras mutación. 1.4. Conclusiones. Capítulo II: Clonado, expresión y análisis de variantes enzimáticas. 2.1. Introducción. 2.2. Materiales y métodos. 2.2.1. Cepas bacterianas y plásmidos. 2.2.2. Medios de cultivo y enzimas. 2.2.3. Soluciones y materiales. 2.2.4. Extracción de ADN (miniprep). 2.2.5. Electroforesis de ADN en gel de agarosa. 2.2.6. Purificación de ADN por gel. 2.2.7. Restriction Free Cloning (RFC). 2.2.8. Concentración de ADN. 2.2.9. Precipitación de ADN con ARNt. 2.2.10. Golden Gate Cloning. 2.2.11. Mutagénesis sitio-dirigida. 2.2.12. Deleción de regiones. 2.2.13. Primers utilizados. 2.2.14. Condiciones de PCR. 2.2.15. Preparación de células electrocompetentes. 2.2.16. Transformación de células electrocompetentes. 2.2.17. Preparación y transformación de células quimiocompetentes.. 2.2.18. Guardado de cepas en freezer. 2.2.19. Envío de cepas en papel de filtro. 2.2.20. Expresión de TACap. 2.2.21. Electroforesis de proteínas PAGE-SDS. 2.2.22. Medida de Tm. 2.2.23. Medida de actividad enzimática. 2.2.24. Cinética de inactivación térmica. 2.3. Resultados y discusión. 2.3.1. Clonado. 2.3.2. Construcción de variantes. 2.3.3. Expresión de proteínas. 2.3.4. Determinación de Tm. 2.3.5. Análisis de algunas mutaciones estabilizantes. 2.3.6. Ensayos de actividad y estabilidad. 2.4. Conclusiones. Conclusiones generales y perspectivas. Anexos. Secuencia de ADN de TACap. Secuencia aminoacídica de TACap. Modificación de campo de fuerza. Librería de parámetros para KLP. Códigos empleados. Archivos adjuntos. Bibliografía |
dc.format.extent.es.fl_str_mv | 142 p. |
dc.format.mimetype.es.fl_str_mv | application/pdf |
dc.identifier.citation.es.fl_str_mv | Tijman Nuñez, A. Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa [en línea] Tesis de maestría. Montevideo : Udelar. FQ, 2023 |
dc.identifier.uri.none.fl_str_mv | https://hdl.handle.net/20.500.12008/41378 |
dc.language.iso.none.fl_str_mv | es spa |
dc.publisher.es.fl_str_mv | Udelar. FQ |
dc.rights.license.none.fl_str_mv | Licencia Creative Commons Atribución - No Comercial - Sin Derivadas (CC - By-NC-ND 4.0) |
dc.rights.none.fl_str_mv | info:eu-repo/semantics/openAccess |
dc.source.none.fl_str_mv | reponame:COLIBRI instname:Universidad de la República instacron:Universidad de la República |
dc.subject.es.fl_str_mv | BIOCATALISIS BIOINFORMATICA TRANSAMINASA |
dc.title.none.fl_str_mv | Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa |
dc.type.es.fl_str_mv | Tesis de maestría |
dc.type.none.fl_str_mv | info:eu-repo/semantics/masterThesis |
dc.type.version.none.fl_str_mv | info:eu-repo/semantics/acceptedVersion |
description | Las enzimas son catalizadores eficientes y sustentables, capaces de llevar a cabo reacciones tanto quimio- como estereoespecíficas difíciles de lograr mediante métodos químicos tradicionales. La biocatálisis se alinea con los principios de la química verde, lo que redunda en ventajas tanto desde el punto de vista ambiental como económico. Un área en la que presenta un gran potencial es la síntesis de aminas quirales. Estas se encuentran presentes en un alto porcentaje de fármacos y compuestos bioactivos, por lo que su producción es un objetivo fundamental para la industria. Su síntesis química tradicional en forma enantioméricamente pura es difícil de lograr, requiriendo catalizadores que utilizan metales pesados y por lo tanto generan alto impacto ambiental. Enzimas como imino-reductasas, aminasas reductivas o transaminasas podrían proveer un proceso mejor para este fin, pero se hace necesaria la búsqueda de enzimas de este tipo que sean capaces de cumplir con los exigentes requisitos de los procesos industriales. En trabajos previos del grupo fue identificada y caracterizada una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa (TACap). Esta enzima demostró ser capaz de utilizar tanto D-alanina como isopropilamina como donores de amino, siendo esta última más atractiva desde un punto de vista económico. La producción y purificación de la enzima fueron optimizadas y la especificidad de sustrato ensayada. En particular se destaca la capacidad de esta enzima de tomar como sustrato aceptor de amino a la fenilacetona, dando como producto a la L anfetamina. Este producto es intermediario en la síntesis del [11C]L-deuterodeprenil, un radiofármaco de utilidad en el diagnóstico de enfermedades neurodegenerativas de uso actualmente en el Centro Uruguayo de Imagenología Molecular.Si bien esto resultó promisorio, el grupo se encontró con bajas conversiones debido a una baja estabilidad de la enzima en las condiciones de reacción. Este trabajo de maestría se planteó aprovechar el avance de los métodos bioinformáticos y de la química computacional para desarrollar, a partir de esta enzima ya caracterizada, variantes que permitiesen cumplir con los requisitos de actividad y estabilidad requeridos para el escalado de la reacción mencionada anteriormente. Partiendo de esta premisa fue recreada una estructura tridimensional de TACap, cuya dinámica molecular fue simulada y analizada para comprender las interacciones moleculares presentes y proponer modificaciones que pudiesen aumentar su estabilidad. Mediante esta estrategia se propuso la eliminación de dos regiones desordenadas. En paralelo fue seguida una estrategia basada en el análisis de la secuencia: fue construida una secuencia consenso utilizando 919 secuencias relacionadas a la TACap. Se ha reportado que los aminoácidos conservados pueden contribuir favorablemente a la estabilidad, por lo que se seleccionó un conjunto de 41 mutaciones puntuales (aminoácido nativo intercambiado por aminoácido consenso) con potencial para estabilizar la proteína. xi Las modificaciones propuestas fueron incorporadas sobre el gen codificante de la enzima nativa mediante PCR, y las variantes fueron expresadas para analizar su estabilidad y actividad. La estabilidad fue evaluada mediante la medida de la temperatura de melting (desnaturalización) aparente (Tm) de las proteínas, y aquellas con un Tm superior a aquel de la enzima nativa fueron evaluadas en cuanto a su actividad. La prueba de actividad fue llevada a cabo mediante un ensayo espectrofotométrico con un sustrato modelo, y aquellas enzimas con una actividad comparable o superior a la de la enzima nativa fueron consideradas para el siguiente paso.Las tres mejores variantes fueron combinadas para dar lugar a cuatro enzimas que fueron nuevamente evaluadas en cuanto a su estabilidad y actividad. Una de estas variantes, conteniendo las mutaciones L106V y Δ211-217, presentó un aumento en la Tm de 6°C, junto con una actividad relativa de 213% comparada con la enzima original, lo que la vuelve una opción muy prometedora para su aplicación a la síntesis del radiofármaco de interés. |
eu_rights_str_mv | openAccess |
format | masterThesis |
id | COLIBRI_4b86659add8201a846c828c93bf048b5 |
identifier_str_mv | Tijman Nuñez, A. Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa [en línea] Tesis de maestría. Montevideo : Udelar. FQ, 2023 |
instacron_str | Universidad de la República |
institution | Universidad de la República |
instname_str | Universidad de la República |
language | spa |
language_invalid_str_mv | es |
network_acronym_str | COLIBRI |
network_name_str | COLIBRI |
oai_identifier_str | oai:colibri.udelar.edu.uy:20.500.12008/41378 |
publishDate | 2023 |
reponame_str | COLIBRI |
repository.mail.fl_str_mv | mabel.seroubian@seciu.edu.uy |
repository.name.fl_str_mv | COLIBRI - Universidad de la República |
repository_id_str | 4771 |
rights_invalid_str_mv | Licencia Creative Commons Atribución - No Comercial - Sin Derivadas (CC - By-NC-ND 4.0) |
spelling | Tijman Nuñez Ariel2023-11-21T16:01:02Z2023-11-21T16:01:02Z2023Tijman Nuñez, A. Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa [en línea] Tesis de maestría. Montevideo : Udelar. FQ, 2023https://hdl.handle.net/20.500.12008/41378Las enzimas son catalizadores eficientes y sustentables, capaces de llevar a cabo reacciones tanto quimio- como estereoespecíficas difíciles de lograr mediante métodos químicos tradicionales. La biocatálisis se alinea con los principios de la química verde, lo que redunda en ventajas tanto desde el punto de vista ambiental como económico. Un área en la que presenta un gran potencial es la síntesis de aminas quirales. Estas se encuentran presentes en un alto porcentaje de fármacos y compuestos bioactivos, por lo que su producción es un objetivo fundamental para la industria. Su síntesis química tradicional en forma enantioméricamente pura es difícil de lograr, requiriendo catalizadores que utilizan metales pesados y por lo tanto generan alto impacto ambiental. Enzimas como imino-reductasas, aminasas reductivas o transaminasas podrían proveer un proceso mejor para este fin, pero se hace necesaria la búsqueda de enzimas de este tipo que sean capaces de cumplir con los exigentes requisitos de los procesos industriales. En trabajos previos del grupo fue identificada y caracterizada una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa (TACap). Esta enzima demostró ser capaz de utilizar tanto D-alanina como isopropilamina como donores de amino, siendo esta última más atractiva desde un punto de vista económico. La producción y purificación de la enzima fueron optimizadas y la especificidad de sustrato ensayada. En particular se destaca la capacidad de esta enzima de tomar como sustrato aceptor de amino a la fenilacetona, dando como producto a la L anfetamina. Este producto es intermediario en la síntesis del [11C]L-deuterodeprenil, un radiofármaco de utilidad en el diagnóstico de enfermedades neurodegenerativas de uso actualmente en el Centro Uruguayo de Imagenología Molecular.Si bien esto resultó promisorio, el grupo se encontró con bajas conversiones debido a una baja estabilidad de la enzima en las condiciones de reacción. Este trabajo de maestría se planteó aprovechar el avance de los métodos bioinformáticos y de la química computacional para desarrollar, a partir de esta enzima ya caracterizada, variantes que permitiesen cumplir con los requisitos de actividad y estabilidad requeridos para el escalado de la reacción mencionada anteriormente. Partiendo de esta premisa fue recreada una estructura tridimensional de TACap, cuya dinámica molecular fue simulada y analizada para comprender las interacciones moleculares presentes y proponer modificaciones que pudiesen aumentar su estabilidad. Mediante esta estrategia se propuso la eliminación de dos regiones desordenadas. En paralelo fue seguida una estrategia basada en el análisis de la secuencia: fue construida una secuencia consenso utilizando 919 secuencias relacionadas a la TACap. Se ha reportado que los aminoácidos conservados pueden contribuir favorablemente a la estabilidad, por lo que se seleccionó un conjunto de 41 mutaciones puntuales (aminoácido nativo intercambiado por aminoácido consenso) con potencial para estabilizar la proteína. xi Las modificaciones propuestas fueron incorporadas sobre el gen codificante de la enzima nativa mediante PCR, y las variantes fueron expresadas para analizar su estabilidad y actividad. La estabilidad fue evaluada mediante la medida de la temperatura de melting (desnaturalización) aparente (Tm) de las proteínas, y aquellas con un Tm superior a aquel de la enzima nativa fueron evaluadas en cuanto a su actividad. La prueba de actividad fue llevada a cabo mediante un ensayo espectrofotométrico con un sustrato modelo, y aquellas enzimas con una actividad comparable o superior a la de la enzima nativa fueron consideradas para el siguiente paso.Las tres mejores variantes fueron combinadas para dar lugar a cuatro enzimas que fueron nuevamente evaluadas en cuanto a su estabilidad y actividad. Una de estas variantes, conteniendo las mutaciones L106V y Δ211-217, presentó un aumento en la Tm de 6°C, junto con una actividad relativa de 213% comparada con la enzima original, lo que la vuelve una opción muy prometedora para su aplicación a la síntesis del radiofármaco de interés.Submitted by Cabrera Jeniffer (jenikana@gmail.com) on 2023-11-21T15:36:49Z No. of bitstreams: 2 license_rdf: 25790 bytes, checksum: 489f03e71d39068f329bdec8798bce58 (MD5) TM_Tijman.pdf: 7033630 bytes, checksum: 27ddf1da0d00c21640bed565ef6d26bf (MD5)Made available in DSpace by Luna Fabiana (fabiana.luna@seciu.edu.uy) on 2023-11-21T16:01:02Z (GMT). No. of bitstreams: 2 license_rdf: 25790 bytes, checksum: 489f03e71d39068f329bdec8798bce58 (MD5) TM_Tijman.pdf: 7033630 bytes, checksum: 27ddf1da0d00c21640bed565ef6d26bf (MD5) Previous issue date: 2023Agradecimientos. Resumen. Abstract.Tabla de contenidos. Lista de tablas. Lista de figuras. Lista de abreviaturas. Introducción. Biocatálisis. Determinación de estructuras tridimensionales de proteínas. Estabilidad de enzimas. Diseño racional in silico. Simulaciones de dinámica molecular. Secuencia consenso. Cálculo de energía libre de plegamiento tras mutación. Aminas quirales y amino transaminasas. ω-transaminasa de Capronia semiimmersa. Vinculación al CUDIM. Objetivos. Objetivo general. Objetivos específicos. Capítulo I: Modelado, simulaciones y análisis bioinformático. 1.1. Introducción. 1.2. Materiales y métodos. 1.2.1. Modelado por homología. 1.2.2. Modelado con AlphaFold2. 1.2.3. Parametrización de aldimina interna Lys-PLP (KLP). 1.2.4. Preparación de estructuras para MD. 2.5. Preparación del sistema y corrida de MD de producción. 1.2.6. Análisis de simulaciones. 1.2.7. Secuencia consenso. 1.2.8. Cambio de energía libre de plegamiento tras mutación. 1.3. Resultados y discusión. 1.3.1. Obtención de estructura de TACap. 1.3.2. Generación de librería para la aldimina interna Lys-PLP (KLP). 1.3.3. Simulaciones de dinámica molecular. 1.3.4. Reportes previos. 1.3.5. Secuencia consenso. 1.3.6. Cambio de energía libre de plegamiento tras mutación. 1.4. Conclusiones. Capítulo II: Clonado, expresión y análisis de variantes enzimáticas. 2.1. Introducción. 2.2. Materiales y métodos. 2.2.1. Cepas bacterianas y plásmidos. 2.2.2. Medios de cultivo y enzimas. 2.2.3. Soluciones y materiales. 2.2.4. Extracción de ADN (miniprep). 2.2.5. Electroforesis de ADN en gel de agarosa. 2.2.6. Purificación de ADN por gel. 2.2.7. Restriction Free Cloning (RFC). 2.2.8. Concentración de ADN. 2.2.9. Precipitación de ADN con ARNt. 2.2.10. Golden Gate Cloning. 2.2.11. Mutagénesis sitio-dirigida. 2.2.12. Deleción de regiones. 2.2.13. Primers utilizados. 2.2.14. Condiciones de PCR. 2.2.15. Preparación de células electrocompetentes. 2.2.16. Transformación de células electrocompetentes. 2.2.17. Preparación y transformación de células quimiocompetentes.. 2.2.18. Guardado de cepas en freezer. 2.2.19. Envío de cepas en papel de filtro. 2.2.20. Expresión de TACap. 2.2.21. Electroforesis de proteínas PAGE-SDS. 2.2.22. Medida de Tm. 2.2.23. Medida de actividad enzimática. 2.2.24. Cinética de inactivación térmica. 2.3. Resultados y discusión. 2.3.1. Clonado. 2.3.2. Construcción de variantes. 2.3.3. Expresión de proteínas. 2.3.4. Determinación de Tm. 2.3.5. Análisis de algunas mutaciones estabilizantes. 2.3.6. Ensayos de actividad y estabilidad. 2.4. Conclusiones. Conclusiones generales y perspectivas. Anexos. Secuencia de ADN de TACap. Secuencia aminoacídica de TACap. Modificación de campo de fuerza. Librería de parámetros para KLP. Códigos empleados. Archivos adjuntos. Bibliografía142 p.application/pdfesspaUdelar. FQLas obras depositadas en el Repositorio se rigen por la Ordenanza de los Derechos de la Propiedad Intelectual de la Universidad de la República.(Res. Nº 91 de C.D.C. de 8/III/1994 – D.O. 7/IV/1994) y por la Ordenanza del Repositorio Abierto de la Universidad de la República (Res. Nº 16 de C.D.C. de 07/10/2014)info:eu-repo/semantics/openAccessLicencia Creative Commons Atribución - No Comercial - Sin Derivadas (CC - By-NC-ND 4.0)BIOCATALISISBIOINFORMATICATRANSAMINASAIngeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersaTesis de maestríainfo:eu-repo/semantics/masterThesisinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionreponame:COLIBRIinstname:Universidad de la Repúblicainstacron:Universidad de la RepúblicaTijman Nuñez, ArielPanizza Scasso, PaolaDans Puiggròs, Pablo D.Universidad de la República (Uruguay). Facultad de QuímicaMagíster en QuímicaLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-84267http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/41378/5/license.txt6429389a7df7277b72b7924fdc7d47a9MD55CC-LICENSElicense_urllicense_urltext/plain; charset=utf-850http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/41378/2/license_urla006180e3f5b2ad0b88185d14284c0e0MD52license_textlicense_texttext/html; charset=utf-814674http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/41378/3/license_text6eed504571858d3e58aeed5ad67e191aMD53license_rdflicense_rdfapplication/rdf+xml; charset=utf-825790http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/41378/4/license_rdf489f03e71d39068f329bdec8798bce58MD54ORIGINALTM_Tijman.pdfTM_Tijman.pdfapplication/pdf7033630http://localhost:8080/xmlui/bitstream/20.500.12008/41378/1/TM_Tijman.pdf27ddf1da0d00c21640bed565ef6d26bfMD5120.500.12008/413782023-11-21 13:16:17.982oai:colibri.udelar.edu.uy:20.500.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Universidadhttps://udelar.edu.uy/https://www.colibri.udelar.edu.uy/oai/requestmabel.seroubian@seciu.edu.uyUruguayopendoar:47712024-07-25T14:34:49.808863COLIBRI - Universidad de la Repúblicafalse |
spellingShingle | Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa Tijman Nuñez, Ariel BIOCATALISIS BIOINFORMATICA TRANSAMINASA |
status_str | acceptedVersion |
title | Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa |
title_full | Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa |
title_fullStr | Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa |
title_full_unstemmed | Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa |
title_short | Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa |
title_sort | Ingeniería de proteínas para la síntesis de aminas quirales: optimización de una ω-transaminasa de Capronia semiimmersa |
topic | BIOCATALISIS BIOINFORMATICA TRANSAMINASA |
url | https://hdl.handle.net/20.500.12008/41378 |